Содержание

Гласперленовый метод. — Студопедия

Стерилизация в среде нагретых стеклянных шариков.

В стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков до 190-250 0С (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.). Изделия стерилизуют в неупакованном виде по режимам, указанным в инструкции по эксплуатации конкретного стерилизатора, разрешенного для применения.

После стерилизации инструменты используют сразу по назначению.

Стерилизация растворами химических средств — вспомогательный метод, который применяют при невозможности использования других. Данный метод применяют для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолябильные материалы. Она имеет следующие недостатки: изделия стерилизуются без упаковки; их необходимо промывать после стерилизации, что может привести к повторному обсеменению микроорганизмами. Преимущества — повсеместная доступность, лёгкость в исполнении и др.

Изделия, стерилизуемые растворами, свободно раскладывают в ёмкости. При большой длине изделие укладывают по спирали, каналы и полости заполняют раствором.

Для стерилизации используют:

6% р-р перекиси водорода при температуре 50 0С – экспозиция 180 минут;

6% р-р перекиси водорода при температуре 18-20 0С – экспозиция 360 минут;

1% р-р «Дезоксон-1» при температуре 18-20 0С — экспозиция 45 минут и др. разрешенные для применения средства.


Температура раствора в момент погружения в него изделий, в процессе стерилизации указанную температуру не поддерживают.

После окончания стерилизации предметы трижды (при стерилизации перекисью водорода дважды) погружают на 5 мин в стерильную воду, каждый раз меняя её, затем стерильным корнцангом их переносят в стерильную ёмкость, выложенную стерильной простынёй.

Поскольку изделия стерилизуют растворами без упаковки, этот метод может быть использован только при децентрализованной системе. По окончании стерилизации изделия используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простынёй, на срок не более 3 суток.

Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов. Стерилизующим агентом являются ионизирующие гамма и бета-излучения. Для индивидуальной упаковки, помимо бумажных, используют пакеты из полиэтилена. В такой упаковке стерильность сохраняется годами, но и он ограничен. Срок годности указывают на упаковке.

Радиационный метод — основной метод промышленной стерилизации. Его применяют предприятия, выпускающие стерильные изделия однократного применения.

Инфракрасный метод стерилизации


⇐ ПредыдущаяСтр 16 из 26Следующая ⇒

Метод основан на применении нового термического агента – кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере стерилизатора температуру 200+3°С. Полный цикл стерилизации стоматологических и микрохирургических инструментов в неупакованном виде занимает в инфракрасном стерилизаторе от 10 до 25 минут (в зависимости от инструментов), включая этапы выхода на режим и охлаждение, после чего инструменты могут использоваться по назначению. Конструкция этих стерилизаторов позволяет целиком размещать в стерилизационной камере и стерилизовать и затем оставлять для охлаждения даже стоматологические щипцы.

Рис.78 Гласперленовый метод стерилизации

 

Гласперленовый метод стерилизации(рис.78)

В стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.). Изделия стерилизуют в неупакованном виде по режимам, указанным в инструкции по эксплуатации конкретного стерилизатора, разрешённого для применения. После стерилизации инструменты используют сразу по назначению.

Радиационный метод стерилизации

Внедрение в медицинскую практику большого количества изделий из термолабильных материалов потребовало применения так называемых «холодных» методов стерилизации, одним из которых является радиационный метод. Источником ионизирующих излучений служат долгоживущие изотопы кобальта и цезия.

Радиационная стерилизация, ставшая одним из основных методов стерилизации термолабильных изделий медицинского назначения, обладает рядом технологических преимуществ. Основными достоинствами этого метода являются: высокая степень инъактивации (потеря своей активности) микроорганизмов, возможность стерилизации больших партий материалов, автоматизация процесса, стерилизация изделий в любой герметичной упаковке и товарной таре.

Радиационный метод используется для промышленной стерилизации одноразовых изделий из полимерных материалов: шприцы, инъекционные иглы, катетеры, системы для переливания крови, режущих инструментов, шовных материалов, перевязочных материалов, ряда лекарственных препаратов и т.д.

В лечебно-профилактических организациях радиационная стерилизация не применяется в связи с большой дороговизной и по соображениям техники безопасности. Однако в последние годы изучаются возможности создания оборудования с использованием ускоренных электронов для стерилизации изделий медицинского назначения в ЛПО.

 

 

Химический метод стерилизации

Разработка химических методов стерилизации изделий медицинского назначения во многом обязана широкому внедрению в медицинскую практику эндоскопического оборудования, разнородные материалы которого не выдерживают высоких температур.

Рис.79 Газовый стерилизатор (формальдегидный)
Химическая стерилизация подразделяется на стерилизацию растворами (веществами) и стерилизацию газами (газовая стерилизация), а также плазменную стерилизацию.

Газовая стерилизация

В настоящее время для газовой стерилизации используются химические соединения, обладающие спороцидным действием, среди них окись этилена, бромистый метил, смесь окиси этилена и бромистого метила (смесь ОБ в соотношении 1:2,5) и формальдегид (рис.79).

При стерилизации газами необходимо на строго определенном уровне поддерживать температуру, влажность, концентрацию газа, давление и экспозицию. Это возможно только при наличии оборудования с автоматизированным прохождением цикла.

Спороцидное действие газа зависит от числа и вида микроорганизмов, оставшихся на поверхности изделий после предстерилизационной обработки. Микробные клетки, оставшиеся на поверхности объекта, уничтожаются сравнительно быстро. В случаях, когда микробные клетки находятся в слое белковых загрязнений, эффективность стерилизации будет сомнительной, так как

клетки, не контактирующие с газом, могут сохранить

жизнедеятельность. Отсюда совершенно очевидно, что все медицинские изделия перед проведением газовой стерилизации должны подвергаться тщательной предстерилизационной очистке.

Рис.80 Плазмовый стерилизатор

 

Плазменная стерилизация

Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная стерилизация в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS (рис.80). Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20 %-ный пероксид водорода. Пероксид водорода и плазма имеют большое преимущество – распадаются на нетоксичные продукты – воду и кислород, не оказывая вредного воздействия на окружающую среду.

Такая технология отличается максимально щадящим воздействием на конструкционные материалы медицинских изделий, что дает уникальные возможности для многократной стерилизации изделий, содержащих высококачественную оптику, электронику, а также изделий со специальными покрытиями или красками. Стерилизация проводится в сухой атмосфере при температуре 36°С – 50°С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности.

Рис.81 Химическая стерилизация эндоскопов
Данный метод стерилизации применяют как альтернативу низкотемпературной газовой стерилизации окисью этилена и стерилизации в парах формальдегида. Использование окиси этилена все более и более ограничивают из-за высокой токсичности стерилизующего агента и необходимости последующей длительной вентиляции стерилизованных изделий.

 

Химическая стерилизация растворами

Химическая стерилизация проводится растворами химических веществ путем полного погружения изделия в раствор на время стерилизационной выдержки, после чего изделие должно быть промыто стерильной водой.

Химический метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы (эндоскопы, лапароскопы, гистероскопы и др.) (рис.81). Конструкция изделия должна позволять стерилизовать его растворами химических средств. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства и промывной жидкости ко всем стерилизуемым поверхностям изделия.

 

При стерилизации растворами химических средств

используют стерильные ёмкости из стекла,

металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений).

Температура растворов, за исключением специальных режимов применения перекиси водорода и средства Лизоформин 3000, должна составлять не менее 20°С для альдегидсодержащих средств и не менее 18°С – для остальных средств.

Современные химические стерилянты и режимы стерилизации

Стерилянт Экспозиционная выдержка Температура раствора
Перекись водорода 6% 6 часов 3 часа 18ºС 50ºС
Дезоксон 1-1% 45 минут 18ºС
Глутарал 2% 4-10 часов 18ºС
Сайдекс 15 минут 20°С

 

Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его укладывают по спирали. Разъёмные изделия стерилизуют в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором. Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть сухими.

Стерильные изделия промываются после перекиси водорода в двух водах по 5 минут.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают (с помощью стерильных пинцетов, корнцангов) на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Высокий риск реконтаминации, а также дороговизна стерилянтов позволяет использовать данный метод только для стерилизации медицинских изделий, сложных в своей конструкции.

 

 

Средства химической стерилизации

 

Для стерилизации изделий разрешены к применению средства отечественного и зарубежного производства из следующих основных химических групп соединений: поверхностно-активных веществ (ПАВ), окислителей, хлорсодержащих средств, средств на основе перекиси водорода, спиртов, альдегидов.

Средства, содержащие спирты, обладают свойством фиксировать загрязнения органического происхождения, что обуславливает необходимость предварительного отмыва загрязнённых изделий перед стерилизацией с соблюдением противоэпидемических мер.

Хлорсодержащие средства (клорсепт, нейтральный аналит и др.), а также большинство средств на основе перекиси водорода предназначены для стерилизации изделий из коррозионностойких металлов, а также других материалов – резин, пластмасс, стекла.

Химическая стерилизация растворами йодата и надуксусной кислоты вызывает сильную коррозию никелевых покрытий и латуни, из которой изготавливают много изделий (шприцевая арматура многоразовых шприцев, бужи, катетеры, зеркала). Коррозионное воздействие растворов перекиси водорода проявляется значительно слабее и практически сводится к потемнению никелевого покрытия и медленному разрушению латуни. При наличии каналов и других незащищённых участков перекись водорода приводит к значительному сокращению срока службы таких медицинских инструментов. При стерилизации изделий медицинского назначения допускается применение только медицинской перекиси водорода.

Более щадящим действием по отношению к материалам, из которых изготавливаются медицинские изделия, обладают альдегидсодержащие средства: Глутарал, Глутарал-Н, Бианол, Аламинол, Сайдекс, Гигасепт ФФ, Лизоформин 3000, Дезоформ, Альдазан 2000, Секусепт-форте, Септодор-Форте и др. Эти средства рекомендованы для изделий из стекла, металлов, резин, пластмасс, в том числе термолабильных. Недостатком многих средств из этой группы является их способность фиксировать органические загрязнения на поверхности и в каналах изделий. Во избежание этого изделия необходимо сначала подвергнуть качественной предстерилизационной очистке.

 

 

Контроль качества стерилизации

 

Качество и эффективность стерилизации зависят от многих факторов, один из них – контроль стерилизации.

В соответствии с инструктивно-методическими документами Минздрава РФ, для получения объективной оценки качества стерилизации ее контроль должен проводиться комплексно:

· Физическими методами – с помощью контрольно-измерительной аппаратуры.

— Предусматривает контроль параметров работы стерилизационного оборудования (таймерами, датчиками температуры, давления и относительной влажности и др.).

— Проводится оператором, обслуживающим стерилизационное оборудование.

— Должен проводиться ежедневно при проведении каждого цикла стерилизации.

— Позволяет оперативно выявить и устранить отклонения в работе стерилизационного оборудования.

Недостаток. Оценивает действие параметров внутри камеры аппарата, а не внутри стерилизуемых упаковок и поэтому должен использоваться в комплексе с другими методами контроля.

· Химическими методами – с помощью химических индикаторов (термотесты фирмы «Винар» и др.).

— Необходим для оперативного контроля нескольких действующих параметров стерилизационного цикла.

— Должен проводиться ежедневно при проведении каждого цикла стерилизации.

— Проводится с использованием химических индикаторов.

— Принцип действия химических индикаторов основан на изменении состояния индикаторного вещества или (и) цвета индикаторной краски при действии определенных параметров стерилизации, строго специфичных для каждого типа индикаторов, в зависимости от метода и режима стерилизации.

По принципу размещения индикаторов на стерилизуемых объектах различают два типа химических индикаторов: наружные и внутренние:

— Наружные индикаторы (ленты, наклейки) крепятся липким слоем на поверхности используемых упаковок (бумага, металл, стекло и т.д.) и удаляются впоследствии. Наружным индикатором могут являться также некоторые упаковочные материалы (например, бумажно-пластиковые мешки, рулоны), содержащие химический индикатор на своей поверхности.

— Внутренние индикаторы размещаются внутри упаковки со стерилизуемыми материалами вне зависимости от ее вида (бумажный пакет или металлический контейнер и др.). К ним относятся различные виды бумажных индикаторных полосок, содержащие на своей поверхности индикаторную краску.

О применении химических термотестов для контроля физической стерилизации (воздушным и паровым методом) говорилось выше.

· Биологическими методами:

1) Основан на гибели споровых форм тест-культур, специфичных для каждого из используемых методов стерилизации (Bas. subtilis, Bac. stearothermophilus). Предназначен для оценки состояния стерильности изделий и материалов. Биологические индикаторы могут быть изготовлены в лабораторных условиях.

2) Посев простерилизованного материала на стерильность и забор смывов на стерильность.

Биологический метод подтверждает эффективность выбранного режима стерилизации.

 

Устройство и принципы работы централизованного стерилизационного отделения (ЦСО)

 

 

Устройство ЦСО

 

ЦСО – централизованные стерилизационные отделения – организованы во всех современных лечебных учреждениях (рис.82).

Задачи ЦСО:

1. предстерилизационная очистка медицинского инструментария;

2. стерилизация:

а) медицинского инструментария,

б) белья и перевязочного материала,

в) резиновых и латексных изделий.

Устройство ЦСО:

«Помещения ЦСО должны быть разделены на три зоны — грязная, чистая и стерильная. К грязной зоне относятся помещения приема и очистки изделий медицинского назначения, к чистой зоне относятся помещения упаковки, комплектации и загрузки в стерилизаторы. К стерильной зоне относятся: стерильная половина стерилизационной — автоклавной, склад стерильных материалов и экспедиция» (СанПиН 2.1.3.2630-10 Санитарно-эпидемические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность.)

Современное центральное стерилизационное отделение должно иметь 3 зоны: «грязную», «чистую» и «стерильную».

«Грязная» зона – это помещения, в которых находится использованный инструментарий и материалы; представлены комнатой для приема материала в контейнерах из отделений и двумя моечными помещениями – одно для непосредственно инструментов и материалов, а другое – для транспортных тележек, на которых осуществляется перевозка контейнеров по лечебному учреждению. «Грязная» зона сообщается с «чистой» только через моечные автоматы проходного типа и посредством закрывающегося передаточного окна (для передачи инструментов, продезинфицированных и высушенных вручную). В состав «грязной» зоны включены также гардероб для верхней одежды и санузлы общего пользования.

«Чистая» зона – это те помещения, что расположены непосредственно за мойками. Там находятся инструменты и материалы уже чистые, но еще не стерильные. К этим помещениям относятся комнаты упаковки и подготовки к стерилизации инструментов, подготовки и упаковки текстиля, изготовления перевязочных материалов, различные складские помещения и комнаты для персонала, одетого в спецодежду (халаты, головные уборы, специальная обувь). Вход в «чистую» зону осуществляется через санпропускник.

«Стерильная» зона – это, собственно, склад простерилизованного материала. Он отделен от «чистой» зоны проходными стерилизаторами. Это помещение особой чистоты, куда вход разрешен только через санпропускник, строго ограниченному персоналу, в специальной одежде, к примеру, обязательно в масках.

Помещения необходимо распланированы таким образом, чтобы потоки грязных, чистых и стерильных материалов и инструментов не пересекались.

 

Принципы работы ЦСО

 

Все изделия, поступающие в ЦСО, проходят несколько этапов технологической цепочки: прием и разборка, предстерилизационная обработка на различных типах оборудования, либо вручную, контроль качества предстерилизационной обработки, комплектование и упаковка, непосредственно стерилизация и выдача (доставка) в клинические отделения.

Наиболее ответственным моментом организации работы ЦСО является сохранение стерильности медицинских изделий при разгрузке из стерилизаторов, комплектовании их в стерильной зоне, при транспортировке и использовании в клинических отделениях.

Простерилизованные изделия в стерилизационных коробках должны оставаться в автоклаве в течение 1,5 –2 часов до полного остывания. Во время остывания не должно быть сквозняков в помещении и доступа холодного воздуха. ЦСО должна быть оборудована приточно-вытяжной вентиляцией.

При разгрузке стерилизатора исключается присутствие других сотрудников ЦСО, кроме персонала стерильной зоны.

Документация ЦСО

Основной перечень документов ЦСО: Паспорт ЦСО, Должностные инструкции заведующего, старшей медсестры, медицинской сестры ЦСО, санитарки, Журнал учета качества ПСО, Журнал контроля работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава), Журнал исследований на стерильность, Инструкция по технике безопасности при работе в стерилизационных, Журнал инструктажа на рабочем месте, Памятка-рекомендация по правильной загрузки парового стерилизатора, Журнал регистрации и контроля бактерицидной установки, Журнал учёта генеральных уборок, Журнал учёта аварийной ситуации, травм медперсонала на рабочем месте.

 

ЖУРНАЛ

учета качества предстерилизационной обработки Начат «____»___________19___г. Окончен «_____»___________19__г.——T———T————T———————————-T————-¦Дата¦ Способ ¦Применяемое¦Результаты выборочного химического¦Фамилия лица,¦¦ ¦обработки¦ средство ¦ контроля обработанных изделий ¦проводившего ¦¦ ¦ ¦ +——-T——T——————-+контроль ¦¦ ¦ ¦ ¦наиме- ¦коли- ¦из них загрязненных¦ ¦¦ ¦ ¦ ¦нование¦чество+———T———-+ ¦¦ ¦ ¦ ¦изделий¦(штук)¦ кровью ¦ моющими ¦ ¦¦ ¦ ¦ ¦ ¦ ¦ ¦ средст ¦ ¦¦ ¦ ¦ ¦ ¦ ¦ ¦ вами ¦ ¦

 

Далее приводятся формы журналов контроля работы стерилизаторов (форма N 257/у) и исследований на стерильность (форма N 258/у).

ЖУРНАЛ
контроля работы стерилизаторов
воздушного, парового (автоклава)
ф. N 257/у

Начат «…» ________ 19 . . г. Окончен «…» _________ 19 . . г.

Указать нормативно-техническую документацию (НТД)
контроля работы стерилизаторов:
1. _______________________________________________
2. _______________________________________________
3. _______________________________________________
4. _______________________________________________
5. _______________________________________________

Дата Марка, N стерилизатора воздушного, парового (автоклава) Стерилизуемые изделия Упаковка Время стерилизации в мин.  
наименование кол-во  
начало конец  
1 2 3 4 5 6 7  
               
               
               
               

и т.д. до конца страницы

 

продолжение

Режим Тест-контроль Подпись
давление температура биологический термический химический
8 9 10 11 12 13
           
           
           
           

и т.д. до конца страницы

 

РАБОЧИЙ ЖУРНАЛ
исследований на стерильность
ф. N 258/у

Начат «…» ________ 19 . . г. Окончен «…» _________ 19 . . г.

Методы отбора образцов и их лабораторные
исследования проводятся в соответствии со
следующей нормативно-технической документацией
(НТД перечислить):
1. ________________________________________
2. ________________________________________
3. ________________________________________
4. ________________________________________

Дата N п/п Регистрационный номер Материал Учреждение, место взятия материала Обработка материала и дата посева Исследование
в аэробных условиях
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
                   

Продолжение

Исследование Результат исследования Дата окончания исследования. Подпись лица, провод. исслед.
в анаэробных условиях
11 12 13 14 15 16 17
             
             
             
             

и т.д. до конца страницы.

 

 

Преимущества стерилизации в ЦСО


Рекомендуемые страницы:

Методы стерилизации

Виды стерилизации

Методы стерилизации

Действующий агент

Физический

паровой (автоклавирование)

пар под избыточным давлением

(120 0С, давление 2,2 атм)

(132 0С, давление 2,9 атм)

воздушный

сухой воздух при 180 °С

гласперленовый

нагретые стеклянные шарики при 190-240 0С

инфракрасный

инфракрасное излучение при 200±3 0С

лучевой

ионизирующее излучение 2- 2,5 Мрад

ультразвуковой

механические колебания с частотой от 2х104до 2х10в сек

Химический

жидкостной

растворы химических соединений (альдегид-, кислород-, хлорсодержащих)

газовый

окись этилена в смеси с углекислым газом, бромистым метилом и др.

плазменный

пары 20 % пероксида водорода

 

Стерилизацию осуществляют физическими (паровой, воздушный, в среде нагретых шариков, инфракрасный, лучевой) и химическими (применение растворов химических средств, газовый) методами, указанными в таблице. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий.


Паровой метод стерилизации (автоклавирование)

Впервые стерилизация паром под повышенным давлением в автоклаве осуществлена в 1884 году Л.Л. Гендейрейхом.

При этом способе стерилизации действующим агентом является горячий пар. В автоклаве возможно нагревание воды под повышенным давлением, что приводит к повышению точки кипения воды и соответственно пара до 1320 С (при давлении 2,9 атм.).

Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стекла, шприцы с пометкой 2000 С, хирургическое белье, перевязочный и шовный материал, изделия из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных видов пластмасс.

Материал для стерилизации помещают в специальные биксы Шиммельбуша, пергамент, бумагу мешочную, упаковочную, крепированную, стерилизационные коробки с фильтром.

Одним из основных условий проведения качественной стерилизации является загрузка автоклава в точном соответствии с рекомендациями производителя. Это означает правильное расположение и количество загружаемых предметов. Водяной пар должен свободно циркулировать, а конденсат своевременно выводиться. При загрузке автоклава обращают внимание на то, чтобы тяжелые инструменты располагались на нижних поддонах, а легкие – на верхних.

Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемым изделиям. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре не выше 40-50°С.

Срок хранения простерилизованных изделий: в биксах без фильтра, в двойной мягкой упаковке – 3 суток; в пергаменте, бумаге мешочной непропитанной, мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток.

Воздушный метод стерилизации

При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух температурой 1600 С и 1800 С; стерилизацию осуществляют в суховоздушных стерилизаторах.

Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, в том числе изготовленные из коррозионнонестойких металлов, шприцы с пометкой 2000 С, инъекционные иглы, изделия из силиконовой резины.

Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки обязательно высушивают в сушильном шкафу при температуре 85 °C до исчезновения видимой влаги.

Качество стерилизации воздушным методом зависит от равномерности распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию.

Изделия стерилизуют завернутыми в стерилизационные упаковочные материалы. Шприцы стерилизуют в разобранном виде.

Во время стерилизации металлических инструментов без упаковки их располагают так, чтобы они не касались друг друга.

Инфракрасная стерилизация

Существуют стерилизаторы, в которых используется метод, основанный на применении кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере температуру 200±30 С. Время инфракрасной стерилизации инструментария в неупакованном виде составляет от 10 до 25 минут. Недостатками данного метода стерилизации являются отсутствие упаковки инструментов, повреждающее воздействие на полимерные материалы и резину, отсутствие контролирующих индикаторов.

Озоновая стерилизация — стерилизуют инструменты простой конфигурации из коррозионностойких сталей и сплавов, применяемые в хирургии и стоматологии (скальпели, пинцеты, зеркала цельнометаллические, гладилки, зонды, шпатели, боры стоматологические твердосплавные), в неупакованном виде.

После стерилизации инструменты используют по назначению сразу (без дополнительного проветривания).

Плазменная стерилизация.

Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная очистка в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS.

Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20%-ный пероксид водорода. Процесс происходит в любой части камеры. Контроль температуры осуществляется инфракрасными датчиками.

Стерилизация в этом случае представляет собой сухой процесс при температуре от +35 до +500 С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности.

Время стерилизации – от 90 до 120 минут.

Стерилизация в среде нагретых стеклянных шариков (гласперленовая)

В стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.). При стерилизации стеклянные шарики нагреваются до температуры 190-2400 С. Стерилизация проводится в течение 5 — 15 секунд.

Недостатком метода является возможность стерилизации только мелких инструментов. У более крупных инструментов для такой обработки доступна только рабочая часть. А полная их стерилизация даже при увеличении экспозиции не удается. Проблемы возникают и со средствами контроля работы этих стерилизаторов.

Ультразвуковая стерилизация

Механические колебания с частотой от 2х104 до 2х108  колебаний в 1 секунду не воспринимаются ухом человека и называются ультразвуком. Для искусственного получения ультразвука служат специальные приборы. Источником ультразвука являются кристаллы кварца, турмалина, обладающие пьезоэлектрическими свойствами. Пьезоэлектрический эффект обусловлен явлением электрической поляризации кристаллов.

При воздействии на ткани ультразвуковой волны происходит образование микроскопических полостей, которые быстро закрываются под воздействием последующего сжатия. Такое явление называется кавитацией. Ультразвуковая кавитация приводит к образованию свободных радикалов, диссоциации молекул воды на ионы Н+ и ОН-, что приводит к нарушению окислительно-восстановительных процессов в микробной клетке.

Ультразвуковые волны используются для стерилизации инструментов, подготовки рук медицинского персонала к операции. Для этого руки (инструменты) погружают в специальную ванну с дезинфицирующим раствором, через который пропускают ультразвуковые волны.

Лучевая стерилизация.

Используют гамма и бета — частицы и относительно тяжелые нейтроны, протоны и т. д. Разница вызываемых ими биологических изменений почти незаметна. Радиоактивное излучение, проходя через среду, вызывает ионизацию последней, в связи с чем его называют ионизирующим излучением. Бактерицидный эффект ионизирующего излучения обусловлен воздействием на метаболические процессы бактериальной клетки. Наибольшее применение получила стерилизация гамма-лучами. Используются изотопы Co60 иCs138. Доза проникающей радиации значительна и составляет 2-2,5 Мрад. В связи с этим лучевая стерилизация в стационарах не производится и применяется в промышленных условиях.

Метод применяется для стерилизации одноразовых инструментов (шприцы, шовный материал, катетеры, зонды, системы для переливания крови, перчатки и др.). При сохранении целостности упаковки стерильные свойства предметов сохраняются в течение 5 лет.

Стерилизация растворами химических средств

Стерилизация изделий растворами химических средств является вспомогательным методом, поскольку изделия нельзя простерилизовать в упаковке, а по окончании стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью (питьевая вода, 0,9 % раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению простерилизованных изделий микроорганизмами.

Данный метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы, то есть в тех случаях, когда особенности материалов изделий не позволяют использовать другие официально рекомендуемые методы стерилизации.

Для стерилизации растворами химических средств используют такие средства, как первомур, перекись водорода, дезоксон — 1, 4, стераниос 20%, сайдекс, лизоформин-3000, глютарали др.

При стерилизации растворами химических средств используют стерильные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений).

Температура растворов, за исключением специальных режимов применения перекиси водорода и средства Лизоформин 3000, должна составлять не менее 200С для альдегидсодержащих средств и не менее 180С – для остальных средств.

Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его укладывают по спирали. Разъемные изделия стерилизуют в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором.

После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики. Изделия извлекают из раствора с помощью стерильных пинцетов (корнцангов), удаляют раствор из каналов и полостей, а затем промывают в стерильной жидкости, налитой в стерильные емкости, согласно рекомендациям методического документа по применению конкретного средства. При каждом переносе из одной емкости в другую освобождение каналов и полостей и их заполнение свежей жидкостью осуществляют с помощью стерильного шприца, пипетки или иного приспособления.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают (с помощью стерильных пинцетов, корнцангов) на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Газовая стерилизация

Для газового метода стерилизации используют смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5 соответственно), окись этилена, пары раствора формальдегида в этиловом спирте, а также озон.

Стерилизацию смесью ОБ и окисью этилена проводят при комнатной температуре (не менее 180 С), при температуре 350 С и 550 С, парами раствора формальдегида в этиловом спирте при температуре 800 С. 

 

 

Гласперленовый стерилизатор: функции, работа 

Если стерилизация маникюрных инструментов будет выполнена мастером некачественно или вовсе проигнорирована, это может оказаться причиной появления у клиентки не только кожных болезней, но и таких опасных недугов, как СПИД, туберкулез или гепатит.

Эту проблему легко предупредить с помощью качественных стерилизаторов для маникюра: они уничтожают все вирусы и бактерии, предотвращая заражение клиентов, что дает возможность сделать процедуру маникюра и наращивания ногтей полностью безопасной. Одним из таких автоклавов является гласперленовый стерилизатор.

Средства для дезинфекции

В настоящее время существует несколько типов стерилизаторов, которые способны обработать маникюрные инструменты согласно принятым санитарным правилам и нормам (санпин). Отличаются они простотой в применении и качественным результатом, выделяют среди них гласперленовые (другое название – шариковые), а также ультрафиолетовые (УФ) устройства.

Более качественными устройствами считаются шариковые автоклавы. Удобство в их применении быстро оценили мастера, которые успели застать времена, когда дезинфекция инструментов проводилась путем длительного кипячения, или же предусматривала химический метод обработки, когда приспособления для маникюра помещали в герметические ёмкости с химическими реагентами.

Например, одним из популярных жидкостей для обработки маникюрных предметов в домашних условиях и салонах до сих пор остаётся Аламинол. Он успешно справляется не только с грибками, но и туберкулезными микробактериями, герпесом и даже ВИЧ-инфекциями (по этой причине Аламинол даже рекомендуют применять для обработки стоматологических инструментов перед применением).

В отношении маникюрных инструментов Аламинол имеет разное применение: для использования в домашних условиях или в салонах, предметы можно в нем просто замочить (лучше всего 8% раствор разводить водой согласно инструкции) и выдержать некоторое время. Ещё лучше Аламинол использовать перед тем, как будет проведена стерилизация инструментов в УФ устройстве и гласперленовом стерилизаторе.

Аламинол является относительно безопасным средством, что позволяет его применять в домашних условиях. Но хоть производитель убеждает, что пары Аламинола и даже непосредственный контакт с кожей особого вреда не наносят, после попадания на кожу, вполне возможны покраснения и раздражения. Если Аламинол оказался на коже, нужно как можно скорее промыть пораженный участок проточной водой.

Не удивительно, что если в домашних условиях подобные методы дезинфекции приемлемы, мастеров они мало устраивают, поскольку требуют немало времени, а в случае с химикатами и осторожности, так как действовать надо четко по инструкции, следить за сроком хранения (все они имеют определённый термин годности), и не пренебрегать правилами безопасности.

Кроме того, такая дезинфекция негативно сказывается на качестве и внешнем виде инструментов: на них быстро появляется ржавчина, они деформируются и затупляются.

Устройства для стерилизации

Появление шариковых автоклавов и УФ-аппаратов мастера приняли на ура. Предпочтение многие салоны отдали гласперленовому стерилизатору, поскольку с помощью ультрафиолетовых устройств можно сделать лишь дезинфекцию, но полностью стерилизовать маникюрные приспособления они не позволяют. УФ устройства хорошо справляются с бактериальной и грибковой флорой, но устранить ВИЧ или гепатит неспособны.

Чтобы полностью обезопасить клиентов, мастера должны не только обрабатывать приборы с помощью УФ-стерилизатора, но и использовать дополнительно высокотемпературную обработку маникюрных инструментов, предварительно обработав их дезинфицирующими растворами (например, Аламинолом).

Ещё одним минусом устройства является то, что для качественной дезинфекции, время обработки крупного предмета с одной стороны занимает около часа, после чего его надо перевернуть и снова выждать нужное время. Для стерилизации мелкого изделия нужно меньше времени – около сорока минут на обе стороны.

От применения УФ аппаратов полностью отказаться нельзя, поскольку гласперленовым стерилизатором можно обрабатывать лишь мелкие предметы, полностью сделанные из металла. Это значит, если инструмент будет иметь ручку, сделанную из другого материала, или окажется слишком крупным для шарикового устройства, обработать его шариковым автоклавом нельзя. В тоже время УФ-стерилизатор все предметы дезинфицирует, не нанося им какого-либо ущерба.

Гласперленовое устройство

При обработке металлических маникюрных инструментов наилучших результатов можно достичь, воспользовавшись гласперленовым стерилизатором. Устройство являет собой автоклав, который дезинфицирует помещенные внутрь приборы путем нагрева и созданием высокого давления (выше атмосферного).

Шариковые стерилизаторы для маникюра бывают различных размеров. Самые большие из них, размером с микроволновку, используют в крупных салонах красоты и клиниках, есть и небольшие приборы, которые можно использовать в домашних условиях.

Применяют автоклав не только для обработки маникюрных предметов: с его помощью можно успешно простерилизовать ножницы, пинцеты, иглы, скальпели и другие мелкие металлические предметы. Отличает гласперленовый стерилизатор такие характеристики, как быстрый нагрев, медленное охлаждение, позволяющее автоклаву продолжительное время пребывать в режиме готовности, экономя время мастера.

Внешнюю часть гласперленового стерилизатора изготавливают из высококачественного пластика, внутреннюю – жаропрочного металла. Внутри находится колба, в которую помещены кварцевые шарики. Окружают колбу со всех сторон нагревательные элементы, которые способны за короткий промежуток времени разогреться до температуры +250°С и нагреть шарики почти до такой же теплоты.

После того как инструменты оказываются в колбе, все патогенные организмы под влиянием исходящей от кварцевых шариков высокой температуры полностью погибают. По этой же причине нельзя стерилизовать изделия, содержащие детали из неметаллических элементов (например, пластик), которые под воздействием высочайшей температуры попросту расплавятся и испортят прибор.

Чтобы простерилизовать металлические предметы, особых подготовительных работ не требуется. Перед процедурой все предметы нужно очистить, вымыть в дезинфицирующем растворе (разводить Аламинол водой согласно инструкции), дать высохнуть. Мокрые инструменты помещать в гласперленовый стерилизатор не рекомендуется, так как это может им навредить. Обрабатывать инструменты для маникюра в стерилизаторе лучше всего непосредственно перед применением.

За полчаса до обработки включить автоклав, дать ему время нагреться (температура шариков достигнет максимальных показателей). После этого опустить в колбу нуждающиеся в обработке изделия. Чтобы избавить их от патогенов понадобиться от тридцати до сорока минут.

Единственное, что надо учитывать при использовании аппарата: со временем кварцевые шарики теряют свою теплопроводимость и оказываются неспособны разогреваться до температуры в 240°С, что дает шанс патогенам выжить.

Чтобы процедура была эффективной, нужно следить за их работой и периодически менять. Насколько часто – во многом зависит от эксплуатации аппарата, в среднем для салонов рекомендуют делать это раз в год. Если все сделать правильно, металлические инструменты останутся острыми и не будут подвержены коррозии и деформации.

Гласперленовые, инфракрасные и ультрафиолетовые стерилизаторы

В Украине появилось много нового стерилизационного оборудования, в котором используются методы и режимы, не определенные ни в одном из нормативных документов. Это касается, в частности, гласперленовых и инфракрасных стерилизаторов, а также форвакуумных стерилизаторов (стерилизаторы с предварительным вакуумированием) с режимом стерилизации 134оС при экспозиции 5 минут. Поэтому целесообразно дать характеристику новым методам стерилизации.

Гласперленовые стерилизаторы

Обработка изделий в гласперленовых стерилизаторах при температуре 190–240оС и экспозиции от 5 до 20 секунд (режимы для стерилизаторов различных производителей отличаются) не является полноценным видом стерилизации. Простерилизовать в них можно лишь очень мелкие изделия (например, стоматологические инструменты: боры различного вида, головки алмазные, дрильборы и др.), полностью размещающиеся в среде нагретых стеклянных шариков цельнометаллические изделия и только в неупакованном виде. После стерилизации инструменты должны быть сразу использованы по назначению.

Что касается более крупных инструментов, у которых в стерилизующей среде можно разместить только их рабочую часть, то экспериментальные данные свидетельствуют о том, что даже 3 минуты выдержки в гласперленовых стерилизаторах не обеспечивают стерилизации щипцов, ножниц и других массивных инструментов. Таким образом, попытки использовать гласперленовые стерилизаторы для стерилизации рабочей части крупных инструментов являются ошибочными и чреватыми инфекционными осложнениями. Химические и биологические средства контроля процесса стерилизации для таких стерилизаторов отсутствуют.

Инфракрасные стерилизаторы

Инфракрасный метод стерилизации основан на использовании кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере стерилизатора температуру 200–203оС.

В зависимости от вида инструмента, продолжительность полного цикла стерилизации составляет от 10 до 25 минут, включая этап выхода на режим и охлаждение, после чего инструменты могут использоваться по назначению. В таких стерилизаторах могут быть простерилизованы без упаковки цельнометаллические термостойкие инструменты, включая щипцы и ножницы.

К недостатку метода следует отнести общий недостаток термических методов – ограничение по материалу обрабатываемых изделий, кроме того – отсутствие упаковки и индикаторов контроля стерилизации.

Необходимо также обратить внимание на легальность использования стерилизационного оборудования. С целью обеспечения населения Украины качественными, эффективными и безопасными медицинскими изделиями Приказом Государственной инспекции по лекарственным средствам №51 от 06.05.2010 г. утвержден «Перечень медицинских изделий, которые подлежат государственной регистрации (перерегистрации) в Украине». В этом перечне указаны «Стерилизаторы медицинские, хирургические или лабораторные», а код этих изделий согласно УКТЗЕД – 8419 20 00 00. Таким образом, на любой стерилизатор должно быть свидетельство о государственной регистрации в Украине в качестве изделия медицинской техники и он должен быть внесен в соответствующий государственный реестр.

Ультрафиолетовые стерилизаторы

Особенно остро стоит проблема использования легального стерилизационного оборудования в парикмахерских и салонах красоты, где для стерилизации инструментария часто используется оборудование, которое не имеет ни какого отношения к стерилизации (например, так называемые «ультрафиолетовые стерилизаторы»). В «Государственных санитарных нормах и правилах для парикмахерских разных типов» (ДСП 2.2.2.022-99) упоминается возможность проведения стерилизации в аппаратах, работающих по методу ультрафиолетовой стерилизации, однако это противоречит не только упомянутому выше ОСТ, но и общепризнанным представлениям о свойствах и возможностях ультрафиолетового излучения.

Наличие заключения государственной санитарно-эпидемиологической экспертизы на так называемый «стерилизатор» не является достаточным для применения такого изделия в качестве стерилизатора.

На сегодня мы не располагаем сведениями о наличии официально зарегистрированного в Украине стерилизационного оборудования, действие которого основано на использовании ультрафиолетового излучения и которое было бы внесено в государственный реестр медицинских изделий.

Гласперленовый стерилизатор: плюсы использования, область применения

фото с сайта elitkosmetik.com

Гласперленовый стерилизатор используется, когда необходимо провести оперативную и бережную стерилизацию большого количества мелких инструментов. Чаще всего этот прибор применяется в салонах красоты и хорошо оборудованных медицинских учреждениях.

Появившись в продаже сравнительно недавно, это итальянское изобретение уже зарекомендовало себя как самое простое и быстрое средство подвергнуть инструмент стерилизации. Раньше в большинстве случаев приходилось долго кипятить инструменты, чтобы уничтожить все вредные микроорганизмы. При этом такие установки занимали много места, а сам инструмент со временем приходил в негодность, ведь ему грозила коррозия, деформация и затупление.

С появлением таких стерилизаторов ситуация изменилась. Это компактные приборы, позволяющие стерилизовать мелкий и средний инструмент за считанные секунды! Сейчас они незаменимы в работе парикмахеров, мастеров маникюра, хирургов, стоматологов и других специалистов, чья деятельность требует возможность частой и быстрой стерилизации.

С помощью этого аппарата можно проводить обеззараживание более сотни мелких и средних инструментов, например, ножниц, пилок, пинцетов, игл, боров, скальпелей, фрезов, зондов и т.д. Инструменты большого размера не подходят для стерилизации в таком приборе.

Сам прибор представляет собой термоустойчивую колбу, наполненную не жидкостью, а множеством стеклянных шариков. Гласперленовый стерилизатор подготавливается к работе за несколько минут — шарики нагреваются до 250 °C, после чего прямо в них погружаются металлические инструменты. Процесс стерилизации длится всего 10-20 секунд, так как металл почти мгновенно нагревается до температуры, при которой погибают все болезнетворные микроорганизмы. Важным плюсом является то, что инструменты сразу готовы к использованию и не нуждаются в сушке и заточке.

Стерилизатор нагревается до рабочей температуры очень быстро, а остывает медленно — то есть может быть использован в любое время, что актуально при большом наплыве клиентов. Купив этот прибор, специалист сможет оформить рабочее место с удобством для себя, ведь стерилизатор легко разместится прямо на столе. Таким образом, этот недорогой прибор станет незаменимым помощником для любого специалиста, ежедневно работающего с инструментом и людьми.

Другие виды стерилизации

 



 

 

Наиболее часто встречающиеся «другие» методы: гласперленовая стерилизация и низкотемпературные методы — газовый, плазменный, озоновый и радиационный.

Гласперленовый метод предназначен для быстрой стерилизации небольших цельнометаллических инструментов, не имеющих полостей, каналов и замковых частей. Метод крайне прост — инструмент погружается в среду мелких стеклянных шариков, нагретых до температуры 190 — 2900С (таким образом, чтобы над рабочей поверхностью инструмента оставался слой шариков не менее 10 мм) на 20 — 180 секунд, в зависимости от размера и массы инструмента. Этот метод используется, в основном, стоматологами для экспресс-стерилизации мелких инструментов — боров, пульпоэкстракторов, корневых игл, алмазных головок и др., а также рабочих частей более крупных — зондов, гладилок, экскаваторов, шпателей и т.д. Так же можно стерилизовать акупунктурные иглы.

Преимущества метода — короткое время стерилизации и отсутствие расходных материалов.

Для термолабильных медицинских изделий (эндоскопы и принадлежности к ним, диализаторы, катетеры и т.п.) наиболее приемлемым является метод газовой стерилизации. Для этого используются химические соединения, обладающие безусловным спороцидным действием: окись этилена, бромистый метил, смесь окиси этилена и бромистого метила (смесь ОБ) и формальдегид. Несмотря на то, что окись этилена является токсическим веществом (при однократном воздействии проявляет себя как малоопасное вещество 4-го класса опасности, при постоянном воздействии — как вещество 2-го класса опасности), она чрезвычайно популярна в качестве стерилизующего агента. Однако, ее токсичность вынуждает проводить дегазацию стерильных изделий (с дожиганием выделяющейся окиси этилена — она весьма горюча).

Газовая стерилизация — метод значительно более сложный, чем традиционные методы стерилизации паром и горячим воздухом. При этом необходимо на строго определенном уровне поддерживать температуру, влажность, концентрацию стерилизующего газа, давление и экспозицию. Это возможно только при наличии оборудования с автоматическим прохождением цикла.

Самым известным этиленоксидным стерилизатором является установка «Комбимат» фирмы МММ (Мюнхенская Медицинская Механика). Стерилизация проводится при температуре 42 — 550С за 60 — 90 минут. Результат практического использования показывает значительное превосходство этиленоксидного метода стерилизации над альтернативными в универсальности, экономичности, ремонтопригодности и технической обеспеченности. Применение данного метода для стерилизации высокоточной термолабильной медицинской аппаратуры получило высокую оценку специалистов ЦСО Центральной Клинической Больницы (Москва) , где этиленоксидные стерилизаторы применяются более 20-ти лет. По заключению специалистов, применение этиленоксидной стерилизации позволяет обеспечить своевременную стерилизацию всего объема термолабильной аппаратуры и инструментария, имеющегося в данном ЛПУ, снизить капитальные затраты на оборудование, текущие затраты на закупку расходных материалов, повысить производительность оборудования, оборачиваемость стерилизуемых изделий и продлить сроки их эксплуатации.

Стерилизация термолабильных изделий формальдегидом стоит на втором месте после этиленоксида. Оптимальный диапазон температуры при формальдегидной стерилизации должен быть 60 — 800С, давление — от 0,25 до 0,475 бар, при концентрации формальдегида от 8 до 15 мг/л. Реально формальдегид используется в концентрации около 30 мг/л, экспозиция до 60 минут; при этом общая продолжительность цикла составляет 3,5 часа (с учетом дегазации простерилизованных изделий (аэрации)).

Не все изделия, стерилизуемые этиленоксидом, можно стерилизовать формальдегидом. Рекомендованное исключение составляют оптические инструменты, имплантируемые изделия, эндоскопическая аппаратура.

Наиболее популярным аппаратом для формальдегидной стерилизации является установка «Формомат», производимая тем же концерном «МММ». Пару лет назад стерилизатор подвергся модернизации и теперь выпускается под маркой «Евро-Формомат».

 

Так называемая плазменная стерилизация, действующим началом которой являются пары перекиси водорода в сочетании с низкотемпературной плазмой, представляющей собой продукты распада пероксида водорода (гидроксильные группы ОН, ООН), образующиеся под воздействием электромагнитного излучения с выделением видимого и ультрафиолетового излучения, в настоящее время находится в стадии становления и, возможно, со временем получит определенное распространение в учреждениях здравоохранения. Пероксид водорода и плазма не обладают такими проникающими способностями, как этиленоксид, но имеют большое преимущество — распадается на нетоксичные продукты — воду и кислород, не оказывая вредного воздействия на окружающую среду. Стерилизация проводится при температуре 46 — 500С за 54 — 72 минуты На сегодняшний день отсутствуют общепризнанные международные стандарты для данного метода. Имеются определенные ограничения в отношении стерилизации материалов, содержащих целлюлозу и каучук. Высокая стоимость оборудования и расходных материалов сужает спектр применения данного метода стерилизации. Кроме того, стерилизация полых многоканальных изделий требует применения дополнительных расходных приспособлений, еще более увеличивающих стоимость цикла стерилизации.

В настоящее время в России наиболее известна система плазменной стерилизации Стеррад, производимая фирмой ASP (США), включающая три установки разного объема: 50, 100 и 200 литров. Более 95% медицинских изделий могут подвергаться стерилизации в этих установках.

Не подлежат стерилизации плазмой изделия из полиамида, некоторые сульфиды, хирургическое белье, перевязочный материал, изделия из целлюлозы, порошки, жидкости.

Таким образом, видимо, использование плазменного метода наиболее приемлемо для стерилизации уникальных термолабильных изделий, имеющихся в единичном экземпляре и используемых неоднократно в течение рабочего дня, в то время как для повседневной рутинной стерилизации все-таки стоит выбрать более доступный и дешевый метод.

 

Один из самых высоких потенциалов окисления имеет озон. Именно поэтому он уже давно привлекает внимание специалистов, занимающихся проблемами стерилизации. В течение многих лет озон используется для обеззараживания питьевой воды и воздуха, и лишь только недавно он был предложен для стерилизации в медицине. Стерилизация производится озоно-воздушной смесью, продуцируемой генератором озона из атмосферного воздуха. Однако, окислительная способность озона и ограничивает его спектр применения. При контакте с ним могут повреждаться изделия из стали, меди, резины и др. Кроме того, озон токсичен, а имеющиеся сегодня аппараты не позволяют обезопасить персонал от контакта с ним. Немаловажным обстоятельством является то, что повторяемость метода до сих пор под вопросом. Для контролирования процесса существуют только индикаторы первого класса (свидетели процесса).

 

Стерилизующим агентом при радиационной стерилизации является проникающее гамма- или бета-излучение. Наиболее широко используется гамма-излучающий изотоп кобальта-60, реже изотоп цезия-137, в связи с его низким уровнем энергии и излучения. Бета-излучающие изотопы используются вообще крайне редко, так как бета-излучение обладает гораздо меньшей проникающей способностью.

Эффективность радиационной стерилизации зависит от общей дозы излучения и не зависит от времени. Средняя летальная доза для микроорганизмов всегда одинакова, проводится ли облучение при низкой интенсивности в течение длительного промежутка времени или недолго при высокой интенсивности излучения. Доза 25 кГр (2,5 Мрад) надежно гарантирует уничтожение высокорезистентных споровых форм микроорганизмов.

Радиационная стерилизация обладает рядом технологических преимуществ: высокая степень инактивации микроорганизмов, возможность стерилизации больших партий материалов, автоматизация процесса, возможность стерилизации материалов в любой герметичной упаковке (кроме радионепрозрачной). Немаловажным обстоятельством является то, что температура стерилизуемых изделий в ходе стерилизации не повышается.

Радиационный метод используется для промышленной стерилизации одноразовых изделий из полимерных материалов, режущих инструментов, шовного и перевязочного материала, некоторых лекарственных препаратов.

В лечебно-профилактических учреждениях радиационная стерилизация не применяется в связи с большой дороговизной установок и по соображениям техники безопасности.

 

 

Другие методы стерилизации | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Озон уже много лет используется в качестве дезинфицирующего средства для питьевой воды. Озон образуется, когда O 2 возбуждается и расщепляется на две одноатомные (O 1 ) молекулы. Затем молекулы одноатомного кислорода сталкиваются с молекулами O 2 с образованием озона, который равен O 3 . Таким образом, озон состоит из O 2 со слабо связанным третьим атомом кислорода, который легко доступен для присоединения и окисления других молекул.Этот дополнительный атом кислорода делает озон мощным окислителем, который разрушает микроорганизмы, но очень нестабилен (т.е. период полураспада составляет 22 минуты при комнатной температуре).

Новый процесс стерилизации, в котором в качестве стерилизатора используется озон, был одобрен FDA в августе 2003 года для обработки многоразовых медицинских устройств. Стерилизатор создает свой собственный стерилизатор из кислорода класса USP, воды качества пара и электричества; стерилизующий агент снова превращается в кислород и водяной пар в конце цикла, проходя через катализатор перед тем, как попасть в комнату.Продолжительность цикла стерилизации составляет около 4 часов 15 минут и происходит при температуре 30-35 ° C. Микробная эффективность была продемонстрирована путем достижения SAL 10 -6 для различных микроорганизмов, включая наиболее устойчивый микроорганизм, Geobacillus stearothermophilus .

Процесс озона совместим с широким спектром широко используемых материалов, включая нержавеющую сталь, титан, анодированный алюминий, керамику, стекло, диоксид кремния, ПВХ, тефлон, силикон, полипропилен, полиэтилен и акрил.Кроме того, могут обрабатываться устройства с жестким просветом следующего диаметра и длины: внутренний диаметр (ID):> 2 мм, длина ≤ 25 см; ID> 3 мм, длина ≤ 47 см; и ID> 4 мм, длина ≤ 60 см.

Процесс должен быть безопасным для использования оператором, поскольку в нем нет операций со стерилизатором, нет токсичных выбросов, нет остатков для аэрации, а низкая рабочая температура означает, что нет опасности случайного ожога. Цикл контролируется с помощью автономного биологического индикатора и химического индикатора.Стерилизационная камера небольшого размера, около 4 футов 3 (Письменное сообщение, S Dufresne, июль 2004 г.).

Генератор газообразного озона был исследован для дезактивации комнат, используемых для размещения пациентов, колонизированных MRSA. Результаты показали, что тестируемое устройство не подходило для дезактивации больничной палаты 946 .

.

Различные методы стерилизации, используемые в лаборатории Westlab

Стерилизация может быть достигнута путем сочетания тепла, химикатов, облучения, высокого давления и фильтрации, например пара под давлением, сухого тепла, ультрафиолетового излучения, парогазовых стерилизаторов, газообразного диоксида хлора и т. Д. Эффективные методы стерилизации необходимы для работы в лаборатории и Игнорирование этого могло привести к тяжелым последствиям и даже стоить жизни.

Итак, какие методы стерилизации наиболее часто используются в лаборатории и как они работают? Читайте дальше…

Тепловой метод: Это наиболее распространенный метод стерилизации.Тепло используется для уничтожения микробов в веществе. На степень стерилизации влияют температура нагрева и продолжительность нагрева. В зависимости от типа используемого тепла методы нагрева делятся на

.

(i) Стерилизация влажным теплом / паром. В большинстве лабораторий это широко используемый метод, который выполняется в автоклавах. В автоклавах используется пар, нагретый до 121–134 ° C под давлением. Это очень эффективный метод, который убивает / дезактивирует все микробы, споры бактерий и вирусы. Автоклавирование убивает микробы путем гидролиза и коагуляции клеточных белков, что эффективно достигается за счет сильного нагрева в присутствии воды.Сильный жар исходит от пара. Сжатый пар обладает высокой скрытой теплотой и при 100 ° C удерживает в 7 раз больше тепла, чем вода при той же температуре. В общем, автоклавы можно сравнить с типичной скороваркой, используемой для приготовления пищи, за исключением того, что почти весь воздух удаляется из автоклава до начала процесса нагрева. Методы стерилизации влажным жаром также включают кипячение и пастеризацию.

(ii) Стерилизация сухим жаром. В этом методе образцы, содержащие бактерии, подвергаются воздействию высоких температур путем сжигания в пламени или печи с горячим воздухом.Обжигание используется для металлических устройств, таких как иглы, скальпели, ножницы и т. Д. Сжигание используется особенно для инокуляции петель, используемых в культурах микробов. Металлический конец петли нагревается до докрасна на пламени. Духовка с горячим воздухом подходит для сухих материалов, таких как порошки, некоторые металлические предметы, стеклянная посуда и т. Д.

Фильтрация — самый быстрый способ стерилизовать растворы без нагрева. Этот метод включает фильтрацию с размером пор, слишком маленьким для прохождения микробов.Обычно для удаления бактерий используются фильтры с диаметром пор 0,2 мкм. Мембранные фильтры — это более часто используемые фильтры, а не фильтры из спеченного материала, сейтца или свечи. Можно отметить, что вирусы и фаги намного меньше бактерий, поэтому метод фильтрации неприменим, если они вызывают наибольшую озабоченность.

Радиационная стерилизация: Этот метод включает облучение упакованных материалов (УФ, рентгеновские лучи, гамма-лучи) для стерилизации. Основное различие между разными типами излучения заключается в их проникновении и, следовательно, в их эффективности.УФ-лучи имеют низкое проникновение и поэтому менее эффективны, но относительно безопасны и могут использоваться для стерилизации небольших площадей. Рентгеновские лучи и гамма-лучи обладают гораздо большей проникающей способностью и поэтому более эффективны для крупномасштабной стерилизации. Однако это более опасно и поэтому требует особого внимания. Ультрафиолетовое облучение обычно используется для стерилизации внутренних частей шкафов биологической безопасности между применениями. Рентгеновские лучи используются для стерилизации больших упаковок и поддонов с медицинскими приборами.Гамма-излучение обычно используется для стерилизации одноразового медицинского оборудования, такого как шприцы, иглы, канюли и наборы для внутривенного введения, а также продуктов питания.

Химический метод стерилизации : Нагревание обеспечивает надежный способ избавиться от всех микробов, но не всегда подходит, так как может повредить стерилизуемый материал. В этом случае используются химические методы стерилизации, которые включают использование вредных жидкостей и токсичных газов без воздействия на материал.Стерилизация эффективна с использованием газов, поскольку они быстро проникают в материал, как пар. Существует несколько рисков, поэтому следует учитывать вероятность взрыва и факторы стоимости.

Обычно для стерилизации используются газы, состоящие из оксида этилена и диоксида углерода. Сюда добавляется углекислый газ, чтобы минимизировать вероятность взрыва. Озон — еще один вариант, который окисляет большую часть органических веществ. Перекись водорода, диоксид азота, растворы глутаральдегида и формальдегида, фталальдегид и перуксусная кислота — это другие примеры химических веществ, используемых для стерилизации.Этанол и IPA хороши в уничтожении микробных клеток, но не действуют на споры.

.

Подготовка и стерилизация инструментов — Исследования в Пенсильванском университете

Инструменты, используемые для хирургии грызунов, являются хрупкими и обычно предназначены для выполнения определенных функций. Неправильное использование этих инструментов приведет к их повреждению и затруднит, а то и сделает невозможным их правильное использование. Например, кровоостанавливающие щипцы предназначены для захвата и удержания таких тканей, как кровеносные сосуды или кожа. Хотя их можно использовать для удержания иглы для наложения швов в экстренных случаях, рутинное использование гемостатических щипцов вместо хирургических иглодержателей не рекомендуется.Эти щипцы не предназначены для надежного захвата иглы, и использование их для наложения швов приведет к повреждению наконечников, что сделает их непригодными для использования по назначению. Инструменты также должны быть подходящего размера для хирургии на грызунах. Использование слишком больших инструментов приведет к усилению движений рук и уменьшению хирургической точности, что приведет к плохой технике и увеличению травм тканей.

Сообщалось, что повторное использование стерилизаторов для стеклянных шариков со временем сделает инструменты хрупкими и тусклыми.Любой инструмент, который часто используется, грубо обращается или очищается абразивными материалами, может быть поврежден или затупился. Инструменты следует регулярно проверять и при необходимости заменять. Ножницы и другие острые инструменты иногда можно затачивать, чтобы продлить жизнь. Инструменты необходимо аккуратно очищать после каждого использования, чтобы гарантировать удаление всей крови и тканей. Ультразвуковой очиститель может помочь в этом процессе. Правильный уход продлит срок службы ваших инструментов и поможет сохранить ваши вложения.

Артикул:
Как выбрать и приобрести хирургический инструмент для хирургических исследований на грызунах. 2012. С. Баран, Э. Джонсон и М. Перрет-Жентиль. https://www.alnmag.com/article/2012/09/how-select-and-procure-surgical-instrumentation-rodent-surgical-research

Перед операцией инструменты и другие принадлежности помещаются в «хирургический пакет». Хирургический пакет должен не только удерживать инструменты и расходные материалы во время процесса стерилизации, но также сохранять стерильность содержимого до использования в хирургии.Существуют различные методы упаковки, в том числе:

  • Инструменты, с лотком для инструментов или без него, упаковываются в сложенную ткань или бумажную пленку и заклеиваются лентой, предназначенной для обозначения достижения стерилизации. Внутри упаковки могут быть размещены индикаторы стерилизации других типов.
  • Пилинговые пакеты — самоуплотняющиеся «конверты», используемые для стерилизации паром или газом. Индикатор стерилизации находится на конверте.

Обеспечение стерильности инструментов во время операции
Используйте дополнительный кусок стерильной салфетки или внутреннюю часть хирургической повязки или конверта в качестве стерильного пространства для размещения инструментов во время операции. Одна из наиболее частых ошибок неопытного хирурга — это установка инструментов на нестерильную поверхность.

Процедуры стерилизации

Хирургические инструменты и другие материалы или оборудование, которые будут контактировать с операционным полем, должны быть стерильными перед использованием.Процесс стерилизации убивает все формы жизни, включая бактериальные споры и вирусы. Химическая дезинфекция — это не то же самое, что стерилизация, и не допускается в качестве основного метода подготовки инструментов для хирургии . Методы стерилизации инструментов включают паровую (автоклав) и газовую (оксид этилена) стерилизацию. Стерилизация сухим жаром с использованием стерилизатора со стеклянными шариками неприемлема для первоначальной стерилизации инструментов перед операцией, но может использоваться во время «периодических» операций.

Паровая стерилизация

  • Паровая стерилизация или стерилизация в автоклаве — наиболее распространенный метод стерилизации инструментов.
  • Инструменты помещаются в хирургический пакет и подвергаются воздействию пара под давлением.
  • Индикатор стерилизации (обязательно), такой как автоклавная лента или индикаторная полоска, используется для идентификации инструментов, которые были стерилизованы.

Оксид этилена

  • Газообразный оксид этилена используется для стерилизации предметов, которые не выдерживают высоких температур и пара в автоклаве.
  • Оксид этилена очень токсичен. Предметы, стерилизованные оксидом этилена, перед использованием необходимо аэрировать, чтобы газ мог рассеяться.

Стерилизаторы для стеклянных шариков:

  • Стерилизаторы со стеклянными шариками могут использоваться для повторной стерилизации инструментов во время хирургической процедуры, но не приемлемы в качестве первоначального метода стерилизации.
  • Стерилизатор для стеклянных шариков
  • имеет центральный отсек, заполненный стеклянными шариками, нагретыми до высокой температуры (приблизительно 5000F).
  • После удаления крови и тканей кончики хирургических инструментов помещают в горячие стеклянные шарики примерно на 10-15 секунд.
  • В этом процессе повторно стерилизуются только кончики инструментов. .
  • Наконечники инструментов сильно нагреваются, и перед использованием их необходимо охладить.
  • Стерилизаторы со стеклянными шариками могут использоваться между животными, когда один набор первоначально автоклавированных инструментов используется для группы до 5 животных.

Инструменты повторного использования

Когда хирургические процедуры должны быть выполнены на нескольких грызунах, один и тот же набор инструментов можно использовать более чем на одном животном под следующие условия.

  • Инструменты должны быть первоначально стерилизованы в автоклаве или газом. Стерилизация .
  • Кровь и частички тканей на концах инструментов необходимо удалить спиртом перед помещением в стерилизатор для стеклянных шариков.
  • Кончики инструментов необходимо поместить в стерилизатор горячих шариков между животными .
  • Новый набор стерильных инструментов необходимо использовать через каждые 4-5 животные.
  • Если кончики инструментов стали загрязнены в результате контакта с нестерильной поверхностью или нестерильными частями тела (например, содержимым желудочно-кишечного тракта), для последующих животных необходимо использовать новый стерильный набор инструментов.

Техника применения наконечника инструмента для особых хирургических процедур на грызунах

Несмотря на свою сложность, техника наконечника инструмента может быть полезна в некоторых хирургических ситуациях на грызунах. Как правило, это ограничивается операциями, при которых разрезы затрагивают только кожу (без воздействия на внутренние органы или манипуляций с ними). При использовании техники «только подсказки» помните о следующих моментах:

  • Для использования метода наконечника инструмента на грызунах-исследователях требуется предварительное одобрение IACUC.
  • Животное должно находиться в хирургической плоскости под анестезией на протяжении всей процедуры.
  • Начните операцию со стерильными инструментами и обращайтесь с ними асептически на протяжении всей процедуры.
  • Один и тот же набор предварительно стерилизованных инструментов может использоваться до пяти аналогичных операций при условии соблюдения асептической техники во всех процедурах.

Стерильные хирургические перчатки можно не носить, если строго соблюдаются следующие критерии:

  • Перчатки меняются после завершения хирургической чистки, так что новые чистые перчатки надеваются в начале хирургической процедуры.
  • Руки в перчатках никогда не касаются рабочего (кончика) конца инструментов, нити, шовной иглы или любой части подготовленного операционного поля.
  • Для работы с тканями животного используются только стерильные кончики инструментов.

Описание процедур в хирургии «только подсказки»

  • Хирург должен носить маску и чистый лабораторный халат или халат . Рекомендуется головной убор (кепка или капот).
  • Поместите под наркозом и хирургически подготовленное животное на обогреватель, накрытый чистым бумажным полотенцем.
  • Откройте стерильный хирургический пакет и любое другое необходимое стерильное оборудование (например, шовный материал), не прикасаясь к стерильному содержимому и не касаясь его.
  • Продезинфицируйте руки дезинфицирующим средством для рук или вымойте руки водой с мылом. После того, как руки высохнут, наденьте чистые смотровые перчатки.
  • Накройте место операции большой стерильной салфеткой . Хирург должен держать простыню только за края, чтобы она не загрязнялась.(Простыня должна содержать «предварительно вырезанное» отверстие , которое обеспечивает доступ к операционному полю, так как хирургу будет трудно вырезать отверстие, не загрязнив простыню.) Для каждого животного необходимо использовать новую стерильную простыню.
  • После того, как хирург взял в руки хирургический инструмент, только кончик инструмента считается стерильным . Если хирург кладет инструмент, стерильный наконечник необходимо положить на стерильную марлевую губку или салфетку.Ручка инструмента не должна касаться стерильной поверхности, чтобы избежать загрязнения этой поверхности.
  • Если кончик хирургического инструмента загрязнен, кончики могут быть повторно стерилизованы, промыв кровь или ткань спиртом или стерильной водой и поместив кончики в стерилизатор с горячими шариками.
  • Имейте в виду, что хирург не может прикасаться руками к кончикам инструментов, шовному материалу или зажимам для ран, шовной игле или любой части подготовленного операционного поля во время операции.
  • Перчатки следует ополаскивать 70% спиртом между операциями. Если вам необходимо использовать другую мышь для обезболивания и подготовки ее, вы должны сменить перчатки перед выполнением следующей операции.

Перейти к животному Подготовка или перейти на обучение Учебник домой

.

Стерилизация | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Большинство медицинских и хирургических устройств, используемых в медицинских учреждениях, изготовлены из термостойких материалов и поэтому подвергаются тепловой стерилизации, в первую очередь паром. Однако с 1950 года увеличилось количество медицинских устройств и инструментов, изготовленных из материалов (например, пластмасс), требующих низкотемпературной стерилизации. Газообразный оксид этилена используется с 1950-х годов для чувствительных к теплу и влажности медицинских устройств.За последние 15 лет был разработан ряд новых низкотемпературных систем стерилизации (например, газовая плазма перекиси водорода, иммерсионная надуксусная кислота, озон), которые используются для стерилизации медицинских устройств. В этом разделе рассматриваются технологии стерилизации, используемые в здравоохранении, и даются рекомендации по их оптимальной эффективности при обработке медицинских изделий. 1, 18, 811-820

Стерилизация уничтожает все микроорганизмы на поверхности изделия или в жидкости для предотвращения передачи заболеваний, связанных с использованием этого предмета.Хотя использование неадекватно стерилизованных важнейших предметов представляет высокий риск передачи патогенов, задокументированная передача патогенов, связанных с недостаточно стерилизованными критическими предметами, чрезвычайно редка. 821, 822 Вероятно, это связано с большим запасом прочности, связанным с процессами стерилизации, используемыми в медицинских учреждениях. Понятие «стерильность» измеряется как вероятность стерильности каждого предмета, подлежащего стерилизации. Эта вероятность обычно называется уровнем гарантии стерильности (SAL) продукта и определяется как вероятность появления одного жизнеспособного микроорганизма на продукте после стерилизации.SAL обычно выражается как 10 −n . Например, если вероятность выживания спор равна одному на миллион, SAL будет 10 −6 . 823, 824 Короче говоря, SAL — это оценка летальности всего процесса стерилизации и консервативный расчет. Двойные SAL (например, 10 −3 SAL для пробирок для культивирования крови, дренажных пакетов; 10 −6 SAL для скальпелей, имплантатов) использовались в Соединенных Штатах в течение многих лет, и выбор из 10 −6 SAL был строго произвольным и не был связан с какими-либо неблагоприятными исходами (например,g., инфекции пациентов). 823

Медицинские изделия, контактирующие со стерильными тканями или жидкостями организма, считаются критически важными. Эти предметы должны быть стерильными при использовании, поскольку любое микробное заражение может привести к передаче болезни. К таким предметам относятся хирургические инструменты, щипцы для биопсии и имплантированные медицинские устройства. Если эти предметы термостойкие, рекомендуемым процессом стерилизации является стерилизация паром, поскольку он имеет самый большой запас безопасности благодаря своей надежности, стабильности и летальности.Однако переработка чувствительных к нагреванию и влаге предметов требует использования низкотемпературной технологии стерилизации (например, оксидом этилена, газовой плазмой пероксида водорода, надуксусной кислотой). 825 Сводка преимуществ и недостатков широко используемых технологий стерилизации представлена ​​в таблице 6.

.